Проведен анализ и подбор генов кандидатов для генных семейств запасных белков (глютенины), генов фотопериода (Ppd) и яровизации MADS (Vrn) и генных семейств факторов инициации трансляции, амилаз, супероксиддисмутазы (SOD), эстераз, и гена шикиматдегидрогеназы (SKDH). Разработаны ПЦР праймеры для детекции полиморфизма аллельных вариантов этих генных семейств. Проведен ПЦР анализ исследуемых линий пшеницы, секвенирование аллельных вариантов генных семейств фотопериода (Ppd), яровизации MADS (Vrn) и амилаз, секвенирование нового поколения для геномной ДНК, обогащенной белок-кодирующими последовательностями генетически отдаленных линий пшеницы. Получены данные по нуклеотидным последовательностям аллельных вариантов наиболее важных для данной культуры генов - изоферментов, запасных белков, генов устойчивости к болезням и гомеостаза.

Оптимизирован состав питательной среды по источникам углерода и азота для инкубирования генно-инженерного штамма дрожжей - продуцента рекомбинантной фитазы АррА. Установлено, что оптимальным источником углерода является глицерин в концентрации 2-4 %. Выявлено, что использование 2 % метанола в качестве индуктора является оптимальным для секреции рекомбинантной фитазы в среду. Выявлено, что наиболее оптимальной температурой наработки клеточной массы и индукции белка является диапазон от +28әС до +30әС, а наиболее эффективным значением pH соответствует диапазон значений от 3 до 6. Установлено, что рекомбинантная фитаза АррА активна при кислом значении рН и имеет максимум при 5,0. Рекомбинантная фитаза АррА имеет максимальную активность при +40әС - +50әС. Полученная рекомбинантная фитаза в лабораторных условиях обладает высокой удельной активностью, активна при кислом значении pH и высокой температуре, что должно обеспечить высокое качество конечного продукта при внедрении его в сельское хозяйство. Получен новый штамм дрожжей P.pastoris X-33 pPICZальфаA/AppA, эффективно экспрессирующий рекомбинантную фитазу AppA.

Оптимизирован состав питательной среды WPM для роста и развития из экспланта пазушных побегов тополей. Наибольший процент сформированных, хорошо развитых пазушных основных побегов получен при культивировании эксплантов на питательной среде WPM с БАП 0,5 мг/л и ГК 0,2 мг/л у тополя серебристого - 70,2 %, у тополя Болле - 57,3 %. Питательная среда 1/2 WPM для древесных культур (уменьшенное содержание макросолей) с добавлением гормона ИМК 0,01 мг/л и без гормона является наиболее оптимальной для укоренения и роста микропобегов тополя серебристого и тополя Болле. Для активного роста корней микропобегов тополя в культуре in vitro может быть рекомендована температура культивирования от 24 до 26әС. В результате анализа все клоны тополя серебристого и тополя Болле были идентичны исходному растению при использовании 5 RAPD-праймеров (OPD 3, OPD 12, OPK 6, OPK 8, OPK 10). В настоящее время для получения сеянцев введено в культуру in vitro 1120 эксплантов двух видов тополей, из них получено 508 микропобегов: 202 микропобега культивируются для получения целых пробирочных растений, 259 микропобега размножаются на среде WPM для корнеобразования и 47 пробирочных растений высажено в почвогрунт. Первая партия 12 клонов в почвогрунте горшках передано в АО \"Астана-Зеленстрой\".

Получен вирусный вектор Т-ВККТ-ГМКСФ, который несет неполные кодирующие последовательности генома ВККТ с геном рчГМ-КСФ, помещенных непосредственно за эукариотическим промотором 35S вируса мозаики цветной капусты СаМV и перед эукариотическим терминатором, что обеспечивает его транскрипцию в эукариотическом геноме. Проведена Agrobacterium - опосредованная инфильтрация растений N.benthamiana с помощью суспензии A.tumefaciens, несущей рекомбинантную конструкцию Ti-ВККТ- ГМ-КСФ в условиях in planta. Достигнута локальная инфекция вирусом ККТ и транзиентная экспрессия белка рчГМ-КСФ in planta. Проведена оптимизация протокола выделения рекомбинантного ГМ-КСФ человека из растительной ткани. Транзиентная экспрессия белка рчГМ-КСФ в растениях N.benthamiana проверена методом Вестерн блоттинг с помощью специфических моноклональных антител к полигистидину. Колонки Ni2+-NTA-агароза использованы для очистки рекомбинантного белка Г-КСФ человека.

Определена оптимальная степень концентрирования послеспиртовой барды и оптимизированы режимы культивирования молочнокислых бактерий в опытно-промышленных условиях. Дана характеристика лабораторных партий препарата \"Лактобардин\" и кормовой белково-жировой пробиотической добавки в процессе хранения. Наработаны 3 образца жидкой формы препарата \"Лактобардин\" в полупромышленных условиях, изучены их микробиологические и биохимические показатели. Разработаны 3 рецепта и технология получения кормовой белково-жировой добавки пробиотического действия с титром молочнокислых бактерий 10 КОЕ/г. Выработаны 3 партии кормовых добавок и изучены их микробиологические, физико-химические и технологические показатели. Разработаны опытно-промышленные регламенты на производство препарата и кормовой белково-жировой добавки пробиотического действия. Кормовая белково-жировая пробиотическая добавка высокой энергетической ценности из отходов или вторичного сырья перерабатывающих производств расширяет ассортимент сырья для выработки комбикормов для сельскохозяйственных животных, птиц и рыб, в связи с чем отпадет необходимость в импорте кормовых высокобелковых добавок.

Выделены азотфиксирующие штаммы Raoultella oxytoca SK1, Raoultella oxytoca SK8 и Raoultella oxytoca SK12, хорошо растущие на безазотистых средах Эшби и Burka. Штамм Sinorhizobium fredii SR1 проверили на способность инфицировать корни растений сои и образовывать клубеньки. Изучена ростовая активность Sinorhizobium fredii SR1 на средах с различным содержанием глюкозы, определена оптимальная концентрация сахарозы - 20,0 г/л. Оптимальным режимом концентрирования культуральной жидкости для Sinorhizobium fredii SR1 является 5000 об/мин при продолжительности процесса 20 минут, а для Raoultella oxytoca SK1 - 8000 об/мин, 20 минут. Определена оптимальная температура распылительной сушки раствора концентрата культуральной жидкости Sinorhizobium fredii SR1 и Raoultella oxytoca SK1. Использование ВАМ грибов в качестве удобрения увеличило урожай клубней картофеля на 30,2 ц/га, что составляет увеличение на 27,4 %. При предпосевной обработке семян ячменя, отмечено значительное положительное влияние на хозяйственно-ценные признаки растений. Использование в качестве удобрения ВАМ грибов для кормового сорго повышает урожайность на 31 %. При совместном способе инокуляции семян сои ВАМ грибами и клубеньковыми бактериями увеличилось количество клубеньков и возросла их активность. Отработан метод получения сухой формы биологического препарата комплексного действия на основе арбускулярно-везикулярной микоризы. Эффективность удобрения доказана на сельскохозяйственных культурах.

Проведен подбор оптимальной питательной среды для Pseudomonas frederiksbergensis 3-6, Geobacillus stearothermophilus 2-5b, Shewanella frigidimarina 3-1x(2). Оптимальное содержание рыбной муки составило от 10 до 15 г/л. При подборе оптимальной среды для азотфиксирующих микроорганизмов Klebsiella oxytoca SК1 более высокие титры культур обеспечивала кукурузно-мелассная среда. Для фосфатмобилизующего штамма Serratia plymuthica N1 выбрана оптимальная питательная среда - кукурузно-мелассная среда, оптимальный режим культивирования в течение 48 часов роста, воздухообмен 400 об/мин. Подобрана оптимальная скорость концентрирования, продолжительность процесса. В результате проведения распылительной сушки концентрата культуральных жидкостей определена оптимальная температура на входе и на выходе. Исследована возможность интродукции и создания устойчивых и жизнеспособных популяций Кlebsiella oxytoca Ph1, Serratia plymuthica N1 в нефтезагрязненной почве. В результате исследования эффективности консорциума в зависимости от загрязнения почвы тяжелыми и легкими фракциями нефти выявлено, что созданный консорциум утилизирует нефтепродукты при различных температурных режимах, что является актуальным для западных регионов Казахстана. При проведении восстановления нефтедеградированных почв методом модельных полевых испытаний содержание нефтепродуктов снизилось до предельно допустимой концентрации нефтепродуктов в почве, кроме контроля без внесения препарата. Доказано положительное влияние азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов при биоремедиации нефтезагрязненной почвы. Отработана технология получения готовой товарной формы препарата в полупромышленных условиях. Разработана рекомендация по очистке почвы от нефтяных загрязнений. Эффективность препарата доказана методом полевых испытаний.

Получены оптимальные параметры масштабирования выращивания культуры клеток ВНК-21(сl-13) роллерно-суспензионным и суспензионным способами. Подготовлена технологическая инструкция. Проведена адаптация фиксированного вакцинного вируса бешенства 71 БелНИИЭВ-ВГНКИ BGCM-V01 к чувствительной культуре клеток ВНК-21(сl-13). Изучены оптимальные параметры культивирования вируса бешенства BGCM-V01. Проведено депонирование штаммов вируса бешенства в коллекцию микроорганизмов. Отработаны параметры биотехнологического контроля качества вирусной биомассы и вакцинного антигена.

Проведен анализ и рассмотрены исторические процессы отечественной истории с древнейших времен до периода независимости в контексте новых теоретико-методологических подходов.

Подобраны варианты кормовых биологически активных добавок с высоким содержанием белка на основе ассоциаций дрожжей и лактобактерий. Изучены биосовместимость и накопление биомассы смешанных культур молочнокислых бактерий и дрожжей. Проведены испытания на токсичность полученных кормовых препаратов в модельных опытах in vivo. Показано, что поликомпонентные кормовые препараты не вызывают выраженного токсикоза. Установлено, что замена в комбикорме 10 % пшеницы на экспериментальные кормовые добавки сохраняет интенсивность роста птиц, повышает сохранность птиц на 10 %, увеличивает яйценоскость на 34,7 %. Разработана технологическая схема получения кормового продукта методом глубинной гетерофазной ферментации целлюлозосодержащего сырья с использованием ассоциации штаммов дрожжей и молочнокислых бактерий.